COMO SE REALIZA UN E.G.O.

Análisis de orina

Una simple muestra de orina puede ayudarnos, una vez analizada, a diagnosticar enfermedades autoinmunes, del riñón, sistémicas como la diabetes o infecciones urinarias. Aprende a descifrar sus resultados.

Escrito por David Saceda Corralo, Médico Interno Residente, especialista en Dermatología Medicoquirúrgica y Veneorología

Cómo se hace un análisis de orina

·         Qué es un análisis de orina y cuándo se realiza

·         Preparación para un análisis de orcionales o urinarios. Después te realizará una exploración física general, y valorará la realización de un análisis de orina. Te dará un volante con el que pide la prueba y señalará los datos que quieren que analicen en el laboratorio.

Días después de esta primera visita, o en el mismo momento, podrás recoger la muestra y llevarla al ambulatorio. Necesitarás un bote estéril que te darán en la consulta del médico o tendrás que comprar en la farmacia. Cuando vayas a recoger la muestra se recomienda tener tus partes íntimas limpias para evitar contaminación, y es mejor que no toques los bordes del bote con nada. Procura recoger la orina de la primera hora de la mañana, ya que estará más concentrada y es más útil para el análisis. El primer chorro de orina al miccionar es mejor no recogerlo porque es habitual que esté contaminado con gérmenes del tracto urinario.

Cuando termines de recoger la muestra cierra el bote con cuidado. Recuerda que para el análisis basta con poco volumen de orina, no hace falta que lo llenes al máximo. Deja el bote a temperatura ambiente, pero llévalo al ambulatorio en las horas siguientes. Si dejas el bote durante muchas horas al aire libre puede contaminarse de microbios o perder sustancias útiles para el análisis.

Cuando llegues a la consulta sólo tendrás que entregarlo y podrás irte. Los resultados pueden tardar desde horas a días y te los darán en la consulta del médico.

BIBLIO-GUÍA 9 CLASIFICACIÓN DE LOS MED. DE CULTIVO

Clasificación de los medios de cultivo  RESUELVE EL EJERCICO AL FINAL DEL DOCUMENTO.

1)      Consistencia

          -Liquida (Caldos), se utiliza AGAR para darle consistencia.

          -Semisólida (Checa si una bacteria es móvil o no.

          -Sólida

2)  Composición química

         – Quimicamente definidos: Se sane exactamente lo que contiene y las cantidades.

        – Químicamente indefinidos: No se sabe exactamente la cantidad que contiene solo el compuesto.

3)  Su uso

1. Medios no selectivos

Son aquellos que no contienen sustancias inhibidoras para el desarrollo de microorganismos, ejemplos: base de agar sangre, agar soy tripticasa

2. Medios enriquecidos

Son aquellos que contienen factores de crecimiento como vitaminas aminoácidos, oligoelementos u otros componentes

3.Medios de enriquecimiento

Son aquellos que favorecen el desarrollo de ciertas especies bacterianas, mientras que inhiben el desarrollo de microorganismos no deseados ejemplo: el caldo Selenito, caldo de Tetrationato, agua peptonadoalcalinizada.

4. Medios selectivos

Estos son utilizados para aislar grupos específicos de bacterias, es decir permite el aislamiento de bacterias, es decir permite el aislamiento de bacterias de un mismo tipo de Gram, dicha selectiva se debe a la presencia de inhibidores componente que no permite el desarrollo de ciertas bacterias y permite el crecimiento de otros y se dividen de acuerdo al grado de su selectividad.

1. Que es un medio de cultivo

2. Como se clasifican por su consistencia.

3. Menciona como se preparan los medios de cultivo ( agar sangre)

4. Menciona un tipo de bacteria que se siembre y se  reproduce en el Agar sangre

5. Que microorganismos se reproducen en el Agar Saborau.
6.- Que factores son los que debes controlar para que se conserve en buen estado los medios de cultivos.
7.-¿Que científico ideo la tincción de gram?

8.- 

Ya resuelto el cuestionario totalmente envía al asesor académico a su correo electrónico.

BIBLIO-GUIA 8 PREPARACIÓN LOS MEDIOS DE CULTIVO

¿Cómo se preparan?   MEDIOS MICROBIOLÓGICOS

1- Tomas las medidas correctas según las instrucciones de cada agar, este se vierte en agua destilada y se mezcla cerca de un mechero para homogenizar la solución y se mezcla hasta que este 100 homogénea, después de esto se deja enfriar con mucho cuidado

2- Después se tapa con un papel y se le adhiere cinta maskin tape, y se mete a un autoclave, esto es para esterilizar los medios de cultivo.

3- Ya que se esterilizo los medios de cultivo, se sacan y se ponen a enfriar ya sea con el ambiente o si quieres puede echarle agua para adelantar el proceso.

4- Teniendo ya los medios de cultivos listos y esterilizados, puedes echar los medios de cultivo en las famosas “cajas de Petri”

5- Las cajas de Petri se colocan debajo de uno o de varios mecheros, esto para evitar la contaminación de microorganismo no deseados, y terminar con la solidificación.

Los medios de cultivos son muy importantes en la microbiología, para el desarrollo de especies importantes según su patogenia y para encontrar las medicinas a las que son inmunes y las que en realidad le van a afectar, son indispensable y fáciles de preparar, con la ayuda de estos medios de cultivo y las pruebas bioquímicas se localizan muy fácil los M.O.

TINCION DE GRAM (PASOS)

• Cómo hacer una tinción de Gram

La tinción de Gram es un procedimiento rápido que se usa para buscar la presencia de bacterias en muestras de tejidos y caracterizarlas como Gram positivas o Gram negativas en base a las propiedades químicas y físicas de sus paredes celulares. La tinción de Gram casi siempre debe realizarse como el primer paso en el diagnóstico de una infección bacteriana.

La tinción de Gram se llama así por el científico danés Hans Christian Gram (1853 – 1938), quien desarrolló la técnica en 1882 y la publicó en 1884 como una técnica para distinguir entre dos tipos de bacterias con síntomas clínicos similares: las bacterias Streptococcus pneumoniae (también conocida como neumococo) y Klebsiella pneumoniae.

1.- Prepárate para el trabajo de laboratorio. Colócate guantes y amárrate el cabello si lo tienes largo para evitar contaminar la muestra de bacteria que vayas a analizar. Desinfecta un espacio de trabajo debajo de la campana extractora o en otra área bien ventilada. Antes de comenzar, revisa que el mechero Bunsen y el microscopio estén operativos.

2.-Esteriliza un portaobjetos de vidrio para microscopio. Si el portaobjetos está sucio, lávalo con agua jabonosa para eliminar la grasa y la suciedad. Desinféctalo con etanol, limpiador de vidrios o el método que recomiende tu laboratorio

3.- Coloca la muestra en el portaobjetos. Puedes usar el método de la tinción de Gram para ayudar a identificar las bacterias presentes en muestras médicas o en cultivos de bacterias en una placa de Petri. Para que la tinción de Gram sea útil, coloca una capa delgada de la muestra sobre el portaobjetos. Es recomendable una muestra que tenga menos de 24 horas, ya que las bacterias más antiguas pueden tener paredes celulares dañadas que responderán de forma menos predecible a la tinción de Gram.

• ·         Si vas a usar una muestra de tejido, coloca de 1 a 2 gotas de la muestra en el portaobjetos de vidrio. Extiéndela uniformemente sobre el portaobjetos para formar una mancha delgada usando el borde de un segundo portaobjetos de vidrio esterilizado. Deja que se seque con el aire antes de continuar.
• ·         Si vas a tomar bacterias de una placa de Petri, esteriliza un asa bacteriológica en la llama de un mechero Bunsen hasta que brille, luego deja que se enfríe. Úsala para colocar una gota de agua esterilizada sobre el portaobjetos y luego esteriliza y enfría el asa otra vez antes de transferir una pequeña muestra de bacteria al portaobjetos y revolverla suavemente en el agua.
• ·         Las bacterias en un medio de cultivo deben mezclarse en un agitador de vórtice y luego colocarse en el portaobjetos con un asa bacteriológica, como se indica anteriormente, pero sin agregar el agua adicional.

·         Si tienes una muestra en un hisopo, pásalo ligeramente por encima del portaobjetos.

 4.- Fija la muestra por calor. El calor fijará las bacterias al portaobjetos de forma que no se enjuaguen tan fácilmente durante la tinción. Pasa rápidamente el portaobjetos dos o tres veces por la llama de un mechero Bunsen o caliéntalo sobre un calentador de portaobjetos eléctrico. No lo sobrecalientes o las muestras podrían distorsionarse. Si vas a usar un mechero Bunsen, la llama debe ser un cono pequeño y azul, no uno alto y anaranjado.

Alternativamente, la muestra puede fijarse con metanol, agregando 1 o 2 gotas sobre la mancha seca, drenando el exceso de metanol y dejando que se seque con el aire. Este método minimiza el daño a las células huésped, dándoles un fondo más limpio.

5.- Posiciona el portaobjetos en una bandeja para tinción. Una bandeja para tinción es una bandeja poco profunda de metal, vidrio o plástico con una pequeña malla o soporte de alambre a lo largo de la parte superior. Coloca el portaobjetos sobre este soporte de forma que los líquidos que vayas a usar puedan drenarse sobre la bandeja.

• ·   Si no tienes una bandeja para tinción, el portaobjetos puede colocarse directamente sobre una cubeta de plástico para hielo.
• 6.-Empapa la muestra con cristal violeta. Usa una pipeta para empapar la muestra de la bacteria con varias gotas de tinte cristal violeta, a veces llamado violeta de genciana. Espera de 30 a 60 segundos. En una solución acuosa, el cristal violeta (CV) se disocia en CV+ e iones de cloruro (Cl-). Estos iones penetran a través de la pared celular y la membrana celular de células tanto Gram positivas como Gram negativas. El ion CV+ interactúa con los componentes con carga negativa de las células bacterianas para mancharlas de violeta.
  ·         Muchos laboratorios usan el cristal violeta de "Hucker", el cual agrega oxalato de amonio para evitar la precipitación.
• 7.- Enjuaga suavemente el cristal violeta. Inclina el portaobjetos y usa un matraz de lavado para rociar un pequeño chorro de agua destilada o de grifo sobre la parte superior del portaobjetos. El agua debería escurrirse sobre la superficie de la mancha pero no estar apuntada directamente a ella.
   No enjuagues excesivamente, lo cual puede quitar la tinción de las bacterias Gram positivas.

Empapa la mancha con yodo y luego enjuaga. Usa una pipeta para cubrir la mancha con yodo. Déjala reposar por lo menos por 60 segundos, luego enjuágala cuidadosamente con el mismo método.^[11] El yodo, en la forma de iones con carga negativa, interactúa con los iones CV+ para formar grandes compuestos de cristal violeta y yodo (compuestos CV-I) dentro de las capas interiores y exteriores de la célula. Esto atrapa el color del cristal violeta en la célula, en el lugar en el que la haya teñido.

Agrega un decolorante y luego enjuaga rápidamente. Para este paso crítico, se usa normalmente una mezcla de acetona y etanol en una proporción de 1:1. La realización de este paso debe calcularse cuidadosamente. Sujeta el portaobjetos en ángulo, luego agrega el decolorante hasta que nada del color violeta sea visible en la escorrentía. Esto normalmente toma menos de 10 segundos o incluso menos tiempo si el decolorante contiene una alta concentración de acetona. 

Detente inmediatamente o el decolorante retirará la tinción de cristal violeta de células tanto Gram positivas como Gram negativas y la tinción tendrá que repetirse. Enjuaga inmediatamente el exceso de decolorante usando la técnica mencionada anteriormente.

·     Puede usarse acetona pura (95%+) en su lugar. Mientras más acetona haya, el decolorante trabajará más rápido, lo que requerirá un cálculo más preciso del tiempo.

·     Si estás teniendo problemas para calcular la realización de este paso, considera agregar el decolorante gota a gota.

Empapa la mancha con un colorante secundario y luego enjuaga. Se usa un colorante secundario, normalmente safranina o fucsina, para agregar un contraste adicional entre las bacterias Gram positivas y Gram negativas, tiñendo las bacterias decoloradas (Gram negativas) de rosado o rojo.^[14][15] Deja el colora

PROGRAMA DE LA ASIGNATURA

MÓDULO II. PROCESAR LAS TÉCNICAS PARA EL DIAGNÓSTICO

MICROBIOLÓGICO Y BACTERIOLÓGICO.

Submódulo VI Procesar las técnicas para el diagnóstico microbiológico. 64 hrs.

Contenido:

1. Procesar técnicas bacteriológicas básicas.

2. Desarrollar técnicas parasitológicas.

·         Submódulo VII Procesar cultivos bacteriológicos. 64 hrs

·         Contenido: Procesar cultivos bacteriológicos.

·         Submódulo VIII Análisis de casos clínicos. 48 hrs Contenido

·         Analizar y resolver casos clínicos diversos sencillos.

Estrategia de evaluación del aprendizaje del módulo: Este módulo se evaluará con la presentación del portafolio de evidencias, en el que el alumno deberá incluir las evidencias de desempeño, producto y conocimiento indicadas en cada una de las guías didácticas desarrolladas en los submódulos correspondientes.

Fuentes de información del módulo

 • Koneman Elmer. Diagnóstico Microbiológico, Editorial Panamericana, 2008

• Mac Fadin. Pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias de importancia médica,  

   Editorial Panamericana, 2003.

• Prats. Microbiología clínica. Panamericana, 2006.

• Forbes. Sahm. Weissfeld. Bayled Scout . Diagnóstico microbiológico, Editorial Panamericana,

   2004.

• Brooks. Geo F. Microbiología médica. Editorial moderno, 2005.

• Levinson. Microbiología e inmunología médica. Editorial Interamerica, 2006.

• Brooks. Geo F. Microbiología médica. Mc Graw Hill Interamericana, 2004

• Conant E. Micología Médica, Editorial Interamericana, 1999.

CALIFICACIONES SEGUNDO MOMENTO

	COLEGIO DE BACHILLERES DEL ESTADO D SINALOA
	PLANTEL 25 "LA CAMPIÑA"
	CALIFICACIONES DEL GPO 505 2017			TOTAL DE ASISTENCIAS				16
	SEGUNDO MOMENTO
505	PROCESAR TÉCNICAS PARA EL  DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO		EVALUACIÓN					COMPETENCIAS
No.	NOMBRE DEL ALUMNO		Asist.	Port.	Exam.	A. Comp		EVALUACIÓN
1	Aispuro Chavez Carmen Rosario		16	10	6	10		A
2	Beltrán Fraide Vanessa Monserrat		16	10	4	10		C
3	Beltrán Medina Silvia thalia		16	10	6	10		B
4	Cansdales Sevilla Kevin Alfredo		16	10	6	10		B
5	Chavez Nuñez Yizelt Angelica		16	10	9	10		A
6	Espinoza Bustamante Brandon		16	10	8	10		A
7	Felix Ornelas Edna Cecilia		16	10	6	10		B
8	García Meraz Briceida Sarahi		16	8	3	10		C
9	Gastelum Camacho Victor Alexis		14	6	5	10		B
10	Gónzalez Felix Pamela Guadalupe		16	10	6	10		B
11	Laureano Ruperto Esthepania		16	10	9	10		A
12	Meza Madueño Brenda Yesenia		16	10	4	10		C
13	Morgan Cruz Julisa Karina		16	5	6	10		B
14	Recio Cabanillas Lizeth Esmeralda		16	10	6	10		B
15	Rodríguez Núñez Gabriela Jazmín		16	10	6	10		B
16	Sainz Zamudio Jesús Ramón		16	10	8	10		A
17	Sánchez  Gastélum Lourdes Ariadna		16	10	9	10		A
18	Soto Alcalá Axel Heriberto		16	10	9	10		A
19	Soto Garay Linda Yamilee		14	6	4	10		A
20	Vega Aguirre Ernesto Alonso		16	8	7	10		A
21	Vazquez Marquez Karely Vianey		16	10	6	10		A

ESTAFILOCOCOS

ESTAFILOCOCOS

Los estreptococos son microorganismos aerobios grampositivos que causan muchas enfermedades, entre ellas faringitis, neumonía, infecciones de la piel y de las heridas, septicemias y endocarditis.

 Los síntomas varían según el órgano infectado. Las secuelas incluyen la fiebre reumática y la glomerulonefritis. La mayoría de las cepas son sensibles a penicilina, aunque recientemente han aparecido cepas resistentes a macrólidos.

Clasificación

Pueden diferenciarse 3 tipos diferentes de estreptococos a partir de su apariencia cuando se cultivan en agar con sangre de carnero. Los estreptococos β-hemolíticos producen zonas de hemólisis clara alrededor de cada colonia, los estreptococos α-hemolíticos (comúnmente llamados estreptococos del grupo viridans) quedan rodeados por una zona con cambio de coloración verdosa debida a la hemólisis incompleta, y los estreptococos γ-hemolíticos no producen hemólisis.

La clasificación posterior, basada en los hidratos de carbono de la pared celular, divide a los estreptococos en los grupos A a H y K a T de Lancefield ( Clasificación de los estreptococos). Los estreptococos del grupo viridans forman un grupo separado que es difícil de clasificar. En la clasificación de Lancefield, los enterococos inicialmente se incluyeron en el grupo de los estreptococos D. Recientemente, los enterococos se clasificaron como un género separado (ver infecciones por enterococos).

Enfermedades causadas por estreptococos

El patógeno estreptocócico más importante es el S. pyogenes, que es β-hemolítico y pertenece al grupo A de Lancefield, y por ello se lo describe como estreptococo β-hemolítico del grupo A (GABHS, Group A Beta-Hemolytic Streptococci).

 Las 2 enfermedades agudas más comunes causadas por este patógeno son la faringitis y las infecciones de la piel; además, unas 2 semanas después de la infección se producen en algunos pacientes complicaciones tardías no supurativas (fiebre reumática, glomerulonefritis aguda).

Las enfermedades causadas por otras especies de estreptococos son menos prevalentes, y por lo general involucran la infección de los tejidos blandos o endocarditis ( Clasificación de los estreptococos). Algunas infecciones no causadas por GABHS se presentan con preferencia en determinadas poblaciones (p. ej., los estreptococos de grupo B en neonatos y mujeres puérperas).

Las infecciones pueden diseminarse a través de los tejidos afectados y a lo largo de las vías linfáticas hasta llegar a los ganglios linfáticos regionales. Pueden causar también complicaciones supurativas locales, como abscesos periamigdalinos, otitis media, sinusitis y bacteriemia. La supuración depende de la gravedad de la infección y de la susceptibilidad del tejido.

Faringitis estreptocócica

Imagen cortesía de la Public Health Image Library de los Centers for Disease Control and Prevention.

La faringitis por estreptococos en general está causada por GABHS. Aproximadamente el 20% de los pacientes presenta dolor de garganta, fiebre, enrojecimiento de la faringe y exudado purulento en las amígdalas. El resto de los casos muestra signos menos prominentes, y se presenta al examen como una faringitis viral. Los ganglios cervicales y submaxilares pueden estar hipertróficos y sensibles al tacto. La faringitis estreptocócica puede producir abscesos periamigdalinos (ver Absceso y celulitis periamigdalinos). La tos, la laringitis y las secreciones nasales no son características de la infección faríngea por estreptococos; su presencia indica otra causa (generalmente viral o alérgica).

Escarlatina

Imagen cortesía de la Public Health Image Library de los Centers for Disease Control and Prevention.

La escarlatina es rara en la actualidad, pero aún se producen brotes. La transmisión aumenta en ambientes que favorecen el contacto cercano entre las personas (p. ej., en las escuelas o guarderías). La escarlatina, una enfermedad predominante de la infancia, generalmente sigue a una infección estreptocócica faríngea; con menor frecuencia, sigue a infecciones estreptocócicas en otros sitios (p. ej., la piel). Está causada por cepas de estreptococos del grupo A que producen una toxina eritrogénica, la cual causa una rubefacción cutánea difusa rosada-rojiza que se blanquea al presionarla. El exantema se observa más en el abdomen o a los costados del tórax y en forma de líneas rojas oscuras en los pliegues cutáneos (líneas de Pastia) o como palidez peribucal. La erupción consiste en elevaciones papulosas características, pequeñas (de 1 a 2 mm) y numerosas, que dan a la piel un aspecto de papel de lija. A menudo, la capa superior de la piel enrojecida se descama después del período febril. También se observa la lengua en fresa (papilas inflamadas que protruyen a través de una cubierta de color rojo intenso), que debe diferenciarse de la que se observa en el síndrome de shock tóxico (ver Síndrome de shock tóxico (TSS)) y en la enfermedad de Kawasaki (ver Enfermedad de Kawasaki (EK)). Otros síntomas son similares a los de la faringitis estreptocócica, y la evolución y el tratamiento de la escarlatina son similares a los de otras infecciones por patógenos del grupo A.