miércoles, 13 de septiembre de 2017

TIPO Y FUNCIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO

TIPOS Y FUNCIONES DE LOS MEDIOS DE CULTIVO.
Según su estado físico (consistencia).

1) Medios líquidos: Son los que se presentan en este estado, denominándose por esta razón caldos. El medio líquido más utilizado es el llamado caldo nutritivo, compuesto principalmente de extracto de carne, peptona y agua. Se utiliza fundamentalmente cuando se pretende la obtención de una suspensión bacteriana de una determinada concentración.
2) Medios sólidos: Se preparan a partir de los medios líquidos, agregándoles un agente gelificante. Los más utilizados son la gelatina y el agar. Pueden utilizarse para diferentes fines, los más importantes son: agar comercial para la industria alimenticia, agar bacteriológico, agares purificados y agarosa, utilizada para electroforesis en gel.

3) Medios semisólidos: Se preparan a partir de los medios líquidos, agregando a éstos un agente solidificante en una proporción menor que para preparar medios sólidos. Uno de sus usos es la investigación de la movilidad de las bacterias
Según su utilización.
1)      Medios comunes: Son aquellos que poseen los componentes mínimos para que pueda producirse el crecimiento de bacterias que no necesiten requerimientos especiales. El medio más conocido de este grupo es el agar nutritivo o agar común, que resulta de la adición de agar al caldo nutritivo.
       2) Medios de enriquecimiento: incorporan una serie de factores indispensables para el crecimiento de microorganismos exigentes. Este enriquecimiento se hace por adición de sangre u otros productos biológicos (sangre, suero, leche, huevo, b ilis, etc.) que aportan dichos factores.
3) Medios selectivos: Son medios utilizados para favorecer el crecimiento de ciertas bacterias contenidas en una población poli microbiana. El fundamento de estos medios consiste en facilitar nutricionalmente el crecimiento de una población microbiana específica.
4) Medios inhibidores: Cuando las sustancias añadidas a un medio selectivo impiden totalmente el crecimiento de una población microbiana, se denomina inhibidor. Los medios inhibidores podrían considerarse como una variante más restrictiva de los medios selectivos.
5) Medios diferenciales: Se utilizan para poner en evidencia características bioquímicas que ayuden a diferenciar géneros o especies.

6) Medios de identificación: Son los destinados a comprobar alguna cualidad específica que puede servirnos para reconocer la identidad de un microorganismo. Estos medios han de poseer los elementos necesarios para asegurar el crecimiento de los microorganismos, el sustrato específico que vaya a ser metabolizado y el indicador que nos muestre el resultado.
7) Medios de multiplicación: Sirven para obtener una gran cantidad de células a partir de un microorganismo ya aislado. Se emplean en la obtención de vacunas, en la investigación y en la industria.
8) Medios de conservación: Se utilizan para conservar una cepa que, por diversas razones nos interese mantener. Fundamentalmente se utilizan como controles de calidad de las pruebas y reactivos utilizados en el Laboratorio de Microbiología.
9) Medios de transporte: Se usan para el transporte de muestras clínicas que no pueden sembrarse inmediatamente.

Agar Chocolate (CHOC) es un medio de cultivo enriquecido y no selectivo. Es una variante del agar sangre. Contiene glóbulos rojos, que han sido lisados por el suave calentamiento a 56 °C. Este agar se usa para el delicado y exigente crecimiento de bacterias respiratorias, como por ejemplo Haemophilus influenzae.
Estas bacterias necesitan factores de crecimiento, como el NAD y hematina, componentes que podemos encontrar dentro de los glóbulos rojos; por lo tanto, un prerrequisito lógico para el crecimiento es la lisis de los glóbulos rojos. El agar se llama así debido a su parecido con el chocolate, pero no contiene nada de este.
Debido a que este medio soporta muchos tipos de bacterias, no es muy útil para coprocultivos.
El agar MacConkey es un medio de cultivo selectivo y diferencial para bacterias diseñado para aislar selectivamente bacilosGram negativos y entéricos (encontrados normalmente en el tracto intestinal) y diferenciarlos sobre la base de la fermentación de la lactosa.1​ El cristal violeta y las sales biliares inhiben el crecimiento de organismos grampositivos, lo que permite la selección y el aislamiento de bacterias gramnegativas. Las bacterias entéricas que tienen la habilidad de fermentar lactosa pueden ser detectadas utilizando el carbohidrato lactosa y el indicador de pH rojo neutro.
 Uso.-.
 Los ingredientes necesarios para este medio son los siguientes: sales biliares (medio inhóspito para el crecimiento de bacterias Gram positivas, excepto Enterococcus y algunas especies de Staphylococcus), colorante cristal violeta (inhóspito para cierto tipo de bacterias Gram-positivo), indicador rojo neutro (el cual marca microorganismos que fermenten la lactosa), lactosa, peptona y cloruro sódico.3

El agar Sabouraud es un medio de cultivo que por sus características funciona como medio de enriquecimiento para hongos y que en caso de contener cloranfenicol u otro antibiótico, se convierte en un medio selectivo para los mismos. El medio contiene peptonas1​ y una elevada concentración de glucosa que favorece el crecimiento de los hongos sobre las bacterias. Es utilizado para el cultivo de hongos, especialmente dermatofitos, aunque también pueden desarrollarse en él cierto tipo de bacterias filamentosas tales como Nocardia.234
Fue utilizado por primera vez por Raymond Sabouraud en 1892. Más tarde Chester W. Emmons mejoró el medio acercando el pH al neutro (pH entre 5,5 y 6,0) y disminuyendo el nivel de glucosa para permitir el crecimiento de otros subcultivos de hongos.
El agar nutritivo es un medio de cultivo usado normalmente como rutina para todo tipo de bacteria. Es muy útil porque permanece sólido incluso a relativamente altas temperaturas. Además, el crecimiento bacteriano en este agar lo hace en la superficie, por lo que se distinguen mejor las colonias pequeñas.
En un caldo de nutrientes, la bacteria crece en el líquido, y aparece como una sustancia espesa, con colonias difícilmente observables.
El agar nutritivo contiene normalmente (p/v)



Agar CLED (Agar cistina-lactosa deficiente en electrolitos)
es un medio de cultivo diferencial para aislar y contar las bacterias presentes en la orina. Favorece el crecimiento de los patógenos y contaminantes urinarios aunque, debido a la ausencia de electrolitos, impide la indebida proliferación de especies de Proteus.

Agar R2A
Un agar inespecífico que imita el agua. Usado para análisis del agua.
Agar cetrimida
Medio utilizado para el aislamiento selectivo de Pseudomonas aeruginosa y de otras especies del género Pseudomonas.

 

Medios para hongos

Agar glucosado de Sabouraud
el Agar glucosado de Sabouraud es usado para cultivar hongos y tiene un pH bajo que inhibe el crecimiento de la mayoría de bacterias, además tiene un antibiótico (gentamicina) que inhibe específicamente el crecimiento de bacterias gramnegativas.
Agar Infusión Cerebro Corazón
Es un medio muy rico en nutrientes, que proporciona un adecuado desarrollo microbiano. La infusión de cerebro de ternera, la infusión de corazón vacuno y la peptona, son la fuente de carbono, nitrógeno, y vitaminas. La glucosa es el hidrato de carbono fermentable, el cloruro de sodio mantiene el balance osmótico y el fosfato disódico otorga capacidad buffer.


es un medio utilizado para el cultivo de hongos y levaduras a partir de muestras de alimentos, derivados de leche y productos cosméticos.




miércoles, 26 de octubre de 2016

COMO CONSULTAR LOS PROGRAMAS DE LA D-G-B- MEDIO SUPERIOR

PASO 1.- Entra a Google

paso 2.- Teclear  planes y programas de la DGB
Paso 3.- Programas de estudio

Paso 4.- Componente de Formación para el Trabajo


Capacitaciones DGB               

Laboratorista Clínico

y aparece el programa en el contenido de los temas 
aparecerá un cuadro donde ubica cada una de las materias
que hay que cursar...

En el tema de la asignatura:  Procesar, Técnicas, para el Diagnóstico Microbiológico. 

La introduccion del programa en general
Buscar el propósito
Objetivos generales

Solo las conclusiones deberan de construir cada uno de los estudiantes.

martes, 27 de septiembre de 2016

PREPARACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVOS

PREPARACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO”

INDICADORES DE APRENDIZAJE: Realiza la preparación de medios de cultivo basándose en sus conocimientos sobre esterilización y características de las bacterias.

GENERALIDADES: Es el material alimenticio en el que crecen los microorganismos, es uno de los sistemas más importantes para el aislamiento y /o identificación de microorganismos. para que las bacterias crezcan adecuadamente en un medio de cultivo, este debe reunir una serie de condiciones como son: temperatura, humedad, oxígeno y PH adecuado.
Además de los nutrientes y factores de crecimiento necesarios para un buen desarrollo bacteriano.
Existen medios que se le añaden diferentes materiales de enriquecimiento (azucares, suero, sangre, bilis), o bien sustancias que los vuelven selectivos porque actúan como inhibidores del crecimiento de unas bacterias también se añaden colorantes que actúan como indicadores para identificar cierto tipo de bacterias.

MATERIAL

REACTIVOS
Matraz Erlenmeyer de 250ml

Medio de EBM
Autoclave

Medio de agar cetritrimida
Algodón

Agar nutritivo
Gasa

Sangre
Balanza

Agua destilada
Mechero

Glicerina
Tripie


Malla con asbesto


Caja de Petri estériles desechables.








PROCEDIMIENTO:
AGAR EMB: Es un medio de cultivo para el aislamiento y diferenciación de bacilos entéricos gram negativos.
El uso de eosina y azul de metileno permite la diferenciación de las colonias fermentadoras de lactosa de las no fermentadoras.

PREPARACIÓN:- Suspender 36 gr  en medio litro de agua purificada, calentar con agitación suave hasta completar disolución y hervir durante un minuto.
Esterilizar en autoclave a 121 °c (15 libras de presión) durante 15 minutos dejar enfriar a temperatura entre 45 y 50 °c y vaciar en cajas de Petri.



AGAR SANGRE
GENERALIDADES: es un medio enriquecido que se utiliza a demás para la investigación de los diversos tipos de hemolisis (ALFA, BETA Y GAMA). Se utiliza para el crecimiento de estreptococos.
 Para su preparación se utiliza un agar base que puede ser (agar nutritivo, agar Columbia o agar tripticase de soya), Adicionándole 5ml de sangre por cada 100ml de medio (5%)

PREPARACIÓN: Suspender 40gr de agar base en un litro de agua purificada mezclar perfectamente, calentar con agitación frecuente y hervir por un minuto hasta disolución completa esterilizar a 121 °c por 15 minutos enfriar  a 45-50°cy adicionar 5% de sangre estéril desfibrinada.

AGAR CETRIMIDA
Medio de cultivo que sirve para el aislamiento de pseudomonas aeruginosas. Las cetrimina (Bromuro de Cetiltrimetilamonio) inhibe el crecimiento de las bacterias debido a su acción como un compuesto cuaternario de amonio.

PREPARACIÓN: Rehidratar 45.3 gr en medio litro de agua destilada, Agregar 10ml de gricerol, reposar de 10 a 15 minutos, Calentar agitando frecuentemente hasta el punto de ebullición durante un minuto para disolverlo  por completo. Esterilizar en autoclave a 121°C  durante 15 minutos, enfriar aproximadamente a 45°C vaciar en cajas de Petri estériles.



EJERCICIOS DE PORTAFOLIO DE EVIDENCIA:
1.- Entregar el reporte de la práctica por escrito con hoja de presentación.
2.- Para complementar los conocimientos adquiridos; resuelve el siguiente cuestionario.
a).- ¿Que es un medios de cultivo?
b).- Clasifica los medios de cultivo por su función.
c).- Después de preparado un medio de cultivo. ¿Qué parámetros  de calidad se deben monitorear?
d).- Los medios de cultivo preparados en la actividad. Como se clasifican
e) Además de proporcionar nutrientes. ¿Qué condiciones debe de reunir medio de cultivo)

F).- ¿Cuáles son los factores más importantes ajenos al medio fe cultivo que se deben proporcionar para un desarrollo adecuado de microorganismos?. 

ENVIAR AL CORREO DEL DOCENTE RESPONSABLE DE LA ASIGNATURA.

viernes, 23 de septiembre de 2016

IDENTIFICACION DE MATERIALES Y EQUIPO DE LABORATORIO CLÍNICO


COLOQUE EL NOMBRE EN EL NÚMERO QUE LE CORRESPONDA.

1.-                                                 2.-                             3.-                                 4.-                         

5.-                                      6.-                                      7.-                            8.-                              9.-


19.-                                 11.-                                12.-                                    13.- 
   

14.-                               15.-                                  16.-                                   17.-    

18.-                                          19.-                          20.-                                21.-          

22.-                                    23.-                                      24.- 



CUESTIONARIO GUÍA

CUESTIONARIO GUÍA PARA EL EXAMEN DEL 2DO. MOMENTO
1.-Que es hemostasia.

2.-Que es hemostasia quirúrgica.

3.-Que entiendes por hemofilia.

4.-Tipo de hemostasia que agrupa todos los procedimientos técnicos que el cirujano emplea para controlar la hemorragia que se produce accidentalmente o durante el acto operatorio. 

5.- Que productos naturales nos ayudan en la hemostasia.

6.-Cuál de los factores participan en la coagulación sanguínea.

7.-Que significa cauterizar.

8.-Que es el tiempo de coagulación.

9.-Que herramientas se utilizan para hacer hemostasia.

10.-Menciona los tipos de anemia.

11.-Menciona loa anticoagulantes de uso clínico.

12.-Que vitaminas nos ayudan a controlar una hemorragia.

13.-Describe que anticoagulante contiene los tubos de uso clínico en los laboratorios?
Rojo                                            amarillo                                                   verde   ___________________  
Azul   __________________      violeta  _______________________         


Envié este archivo electrónico al correo del docente  antes de _____________ del presente año.


TIEMPO DE PROTROMBINA

"MEDICIÓN DEL SISTEMA EXTRÍNSECO
TIEMPO DE PROTROMBINA ( TP ) EN UNA ETAPA"

1.    INTRODUCCIÓN.

El análisis de tiempo de Protrombina es sensible a las deficiencias del sistema extrínseco de la coagulación (factores I, II, V, VII ó X ). El TP se utiliza como exploraci6n prequirúrgica para detectar posibles problemas hemorrágicos. Un TP prolongado Generalmente es indicativo de un nivel bajo en uno o más de los factores del sistema de coagulación extrínseco ó común, cuya causa pueden ser trastornos hereditarios de la coagulación, una deficiencia de vitamina K, problemas hepáticos ó ingestión de fármacos. El TP es el análisis de laboratorio más corriente empleado para monitorizar la terapia anticoagulante oral, puesto que es sensible a los factores VII y X.

No es sensible a las deficiencias del sistema intrínseco (factores VIII. IX. XI y XII ) ó a las disfunciones plaquetarias. No puede utilizarse para la monitorización de la terapia de heparina, para la cual está recomendada la determinación del Tiempo de activación Parcial de Tromboplastina ( ATTP)


2.    PRINCIPIO Y METODOLOGÍA
El TP es el tiempo requerido para que se coagule el plasma después de agregarle tromboplastina tisular v una cantidad óptima de cloruro de calcio,  reponiendo el calcio  que fue inactivado con el anticoagulante y agregando una tromboplastina completa para activar la vía extrínseca. El método de referencia de la Prueba del TP en una etapa es el recomendado por el Consejo Internacional de Estandarización en Hematología/Consejo Internacional de Trombosis y Hemostasia (CIEH/CITH).

Los resultados obtenidos dependen de numerosos factores como la temperatura, la calidad del agua, el pH, la fuerza iónica, el método de ensayo utilizado, la recogida y conservación de las muestras, y la población de pacientes en consideración. Los rangos normales de muestras deben ser establecidos para cada laboratorio.
  Para cada nuevo lote de tromboplastina (preparada en el laboratorio o comercial ), se deben establecer valores normales en muestras de plasma, de aproximadamente 20 hombres ó mujeres que no estén tomando anticonceptivos. Para ello, no es necesario que todas las pruebas se efectúen el mismo día. Es preferible hacerlas en días distintos pues así se consigue agregar la variabilidad de día a día. La media y la desviación estándar se calculan a partir de los resultados.

El resultado de la prueba en segundos se convierte a Porcentaje de Actividad normal por medio de una curva de referencia.
El Índice de tiempo de Protrombina se calcula dividiendo el TP por el TP medio Del rango normal del laboratorio, representado por una muestra testigo normal.
  Para emplearse en el control de la medicación anticoagulante, el Índice de Protrombina debe designarse en los informes de laboratorio de manera estándar como Tasa Normalizada Internacional de Protrombina ó INR del inglés International Normalizad Ratio. 

SE SUGIERE PUES, REPORTAR DE LA SIGUIENTE MANERA:

TIEMPO DE PROTROMBINA:
Testigo del dia ……………………………………..X segundos
Plasma Problema …………………………….... …X segundos
Porcentaje de actividad ……………………… ……….%
INR  ………………………………………………………X

3. LISTA DE REQUERIMIENTOS.

3.1  Reactivos
NUM
NOMBRE DEL REACTIVO
CONC
CANTIDAD
1
Reactivo de Tromboplastina.*
200μl
2
Diluyente**
10 ml
3
Anticoagulante Citrato de sodio
3.2 a3.8%
1gota/ml de sangre

*Reactivo de Tromboplastina: Tromboplastina tisular procedente de cerebro de
  conejo, iones de Caldo V estabilizador .

**Diluyente. Estabilizadores y Conservantes. Contiene azida sódica al 0.05% como conservante.

 3.2  Equipo de Laboratorio
-    Baño María con termostato a 37º C
-    Cronometro.
    3.3 Material de Laboratorio
CANTIDAD
DESCRIPCIÓN
1
Micropipeta con punta desechable
1
Tubos de recogida al vacío  con   citrato de sodio al 3.2% ó 3.8%.
1
Gradilla.
3
Tubos de ensayo de fondo redondo que quepan en la Gradilla.
1
Gancho de alambre  metálico,


4.PROCEDIMIENTO

4.1 Técnica:
4.1.1  Calentar previamente un volumen suficiente del reactivo de tromboplastina reconstituido a 37ºC .Tomar las precauciones necesarias para Impedir la evaporación y no mantener a 37ºC sin tapón durante más de 60 minutos antes del uso.
4.1.2. Etiquetar un tubo de ensayo para cada muestra ( paciente y control) del análisis.

4.1.3.  Agregar 0.1 ml de muestra al tubo apropiado.
4.1.4   Incubar cada muestra y control a 37ºC de 3 a 10 min.
4.1.5   Con fuerza, agregar 0.2 ml del reactivo de tromboplastina precalentado, y al mismo tiempo, iniciar el cronometraje de detección de coagulación. 
4.1.6   Anotar el tiempo en segundos requerido para detectar la coagulación.

4.2 Preparación de la Muestra  y del Reactivo.

4.2.1Muestra: No es necesario que el paciente esté en ayunas ni se someta a otra preparación especial. Se recomienda plasma con anticoagulante de citrato de sodio al 3.2% en una proporción de nueve partes de sangre por una de anticoagulante.

4.2.2 Reactivo: El reactivo se prepara de la siguiente manera:
Reconstituir un vial de reactivo de tromboplastina con un vial de diluyente. Los dos componentes deben ser del mismo lote del kit. Volver a tapar el vial e invertirlo suavemente varias veces para garantizar una rehidratación completa. Dejar reposar durante 30 min. A temperatura ambiente. Invertir suavemente antes de su uso para garantizar homogeneidad .El reactivo permanece estable durante cuatro días si se mantiene en el vial original, tapado herméticamente y se almacena a 2-8ºC, y registrar la fecha de la reconstitución en la etiqueta del vial.