miércoles, 8 de noviembre de 2017

TINCION DE GRAM (PASOS)



La tinción de Gram es un procedimiento rápido que se usa para buscar la presencia de bacterias en muestras de tejidos y caracterizarlas como Gram positivas o Gram negativas en base a las propiedades químicas y físicas de sus paredes celulares. La tinción de Gram casi siempre debe realizarse como el primer paso en el diagnóstico de una infección bacteriana.


La tinción de Gram se llama así por el científico danés 
Hans Christian Gram (1853 – 1938), quien desarrolló la técnica en 1882 y la publicó en 1884 como una técnica para distinguir entre dos tipos de bacterias con síntomas clínicos similares: las bacterias Streptococcus pneumoniae (también conocida como neumococo) y Klebsiella pneumoniae.

1.- Prepárate para el trabajo de laboratorio. Colócate guantes y amárrate el cabello si lo tienes largo para evitar contaminar la muestra de bacteria que vayas a analizar. Desinfecta un espacio de trabajo debajo de la campana extractora o en otra área bien ventilada. Antes de comenzar, revisa que el mechero Bunsen y el microscopio estén operativos.

2.-Esteriliza un portaobjetos de vidrio para microscopio. Si el portaobjetos está sucio, lávalo con agua jabonosa para eliminar la grasa y la suciedad. Desinféctalo con etanol, limpiador de vidrios o el método que recomiende tu laboratorio

3.- Coloca la muestra en el portaobjetos. Puedes usar el método de la tinción de Gram para ayudar a identificar las bacterias presentes en muestras médicas o en cultivos de bacterias en una placa de Petri. Para que la tinción de Gram sea útil, coloca una capa delgada de la muestra sobre el portaobjetos. Es recomendable una muestra que tenga menos de 24 horas, ya que las bacterias más antiguas pueden tener paredes celulares dañadas que responderán de forma menos predecible a la tinción de Gram.

  • ·         Si vas a usar una muestra de tejido, coloca de 1 a 2 gotas de la muestra en el portaobjetos de vidrio. Extiéndela uniformemente sobre el portaobjetos para formar una mancha delgada usando el borde de un segundo portaobjetos de vidrio esterilizado. Deja que se seque con el aire antes de continuar.
  • ·         Si vas a tomar bacterias de una placa de Petri, esteriliza un asa bacteriológica en la llama de un mechero Bunsen hasta que brille, luego deja que se enfríe. Úsala para colocar una gota de agua esterilizada sobre el portaobjetos y luego esteriliza y enfría el asa otra vez antes de transferir una pequeña muestra de bacteria al portaobjetos y revolverla suavemente en el agua.
  • ·         Las bacterias en un medio de cultivo deben mezclarse en un agitador de vórtice y luego colocarse en el portaobjetos con un asa bacteriológica, como se indica anteriormente, pero sin agregar el agua adicional.

·         Si tienes una muestra en un hisopo, pásalo ligeramente por encima del portaobjetos.

 4.- Fija la muestra por calor. El calor fijará las bacterias al portaobjetos de forma que no se enjuaguen tan fácilmente durante la tinción. Pasa rápidamente el portaobjetos dos o tres veces por la llama de un mechero Bunsen o caliéntalo sobre un calentador de portaobjetos eléctrico. No lo sobrecalientes o las muestras podrían distorsionarse. Si vas a usar un mechero Bunsen, la llama debe ser un cono pequeño y azul, no uno alto y anaranjado.

Alternativamente, la muestra puede fijarse con metanol, agregando 1 o 2 gotas sobre la mancha seca, drenando el exceso de metanol y dejando que se seque con el aire. Este método minimiza el daño a las células huésped, dándoles un fondo más limpio.

5.- Posiciona el portaobjetos en una bandeja para tinción. Una bandeja para tinción es una bandeja poco profunda de metal, vidrio o plástico con una pequeña malla o soporte de alambre a lo largo de la parte superior. Coloca el portaobjetos sobre este soporte de forma que los líquidos que vayas a usar puedan drenarse sobre la bandeja.

  • ·   Si no tienes una bandeja para tinción, el portaobjetos puede colocarse directamente sobre una cubeta de plástico para hielo.
  • 6.-Empapa la muestra con cristal violeta. Usa una pipeta para empapar la muestra de la bacteria con varias gotas de tinte cristal violeta, a veces llamado violeta de genciana. Espera de 30 a 60 segundos. En una solución acuosa, el cristal violeta (CV) se disocia en CV+ e iones de cloruro (Cl-). Estos iones penetran a través de la pared celular y la membrana celular de células tanto Gram positivas como Gram negativas. El ion CV+ interactúa con los componentes con carga negativa de las células bacterianas para mancharlas de violeta.
    ·         Muchos laboratorios usan el cristal violeta de "Hucker", el cual agrega oxalato de amonio para evitar la precipitación.
  • 7.- Enjuaga suavemente el cristal violeta. Inclina el portaobjetos y usa un matraz de lavado para rociar un pequeño chorro de agua destilada o de grifo sobre la parte superior del portaobjetos. El agua debería escurrirse sobre la superficie de la mancha pero no estar apuntada directamente a ella.
     No enjuagues excesivamente, lo cual puede quitar la tinción de las bacterias Gram positivas.

Empapa la mancha con yodo y luego enjuaga. Usa una pipeta para cubrir la mancha con yodo. Déjala reposar por lo menos por 60 segundos, luego enjuágala cuidadosamente con el mismo método.[11] El yodo, en la forma de iones con carga negativa, interactúa con los iones CV+ para formar grandes compuestos de cristal violeta y yodo (compuestos CV-I) dentro de las capas interiores y exteriores de la célula. Esto atrapa el color del cristal violeta en la célula, en el lugar en el que la haya teñido.

Agrega un decolorante y luego enjuaga rápidamente. Para este paso crítico, se usa normalmente una mezcla de acetona y etanol en una proporción de 1:1. La realización de este paso debe calcularse cuidadosamente. Sujeta el portaobjetos en ángulo, luego agrega el decolorante hasta que nada del color violeta sea visible en la escorrentía. Esto normalmente toma menos de 10 segundos o incluso menos tiempo si el decolorante contiene una alta concentración de acetona. 



Detente inmediatamente o el decolorante retirará la tinción de cristal violeta de células tanto Gram positivas como Gram negativas y la tinción tendrá que repetirse. Enjuaga inmediatamente el exceso de decolorante usando la técnica mencionada anteriormente.
·     Puede usarse acetona pura (95%+) en su lugar. Mientras más acetona haya, el decolorante trabajará más rápido, lo que requerirá un cálculo más preciso del tiempo.
·     Si estás teniendo problemas para calcular la realización de este paso, considera agregar el decolorante gota a gota.

Empapa la mancha con un colorante secundario y luego enjuaga. Se usa un colorante secundario, normalmente safranina o fucsina, para agregar un contraste adicional entre las bacterias Gram positivas y Gram negativas, tiñendo las bacterias decoloradas (Gram negativas) de rosado o rojo.[14][15] Deja el colora








lunes, 30 de octubre de 2017

PROGRAMA DE LA ASIGNATURA

MÓDULO II. PROCESAR LAS TÉCNICAS PARA EL DIAGNÓSTICO
MICROBIOLÓGICO Y BACTERIOLÓGICO.

Submódulo VI Procesar las técnicas para el diagnóstico microbiológico. 64 hrs.
Contenido:
1. Procesar técnicas bacteriológicas básicas.
2. Desarrollar técnicas parasitológicas.
·         Submódulo VII Procesar cultivos bacteriológicos. 64 hrs
·         Contenido: Procesar cultivos bacteriológicos.
·         Submódulo VIII Análisis de casos clínicos. 48 hrs Contenido
·         Analizar y resolver casos clínicos diversos sencillos.

Estrategia de evaluación del aprendizaje del módulo: Este módulo se evaluará con la presentación del portafolio de evidencias, en el que el alumno deberá incluir las evidencias de desempeño, producto y conocimiento indicadas en cada una de las guías didácticas desarrolladas en los submódulos correspondientes.

Fuentes de información del módulo
 • Koneman Elmer. Diagnóstico Microbiológico, Editorial Panamericana, 2008
• Mac Fadin. Pruebas bioquímicas para la identificación de bacterias de importancia médica,  
   Editorial Panamericana, 2003.
• Prats. Microbiología clínica. Panamericana, 2006.
• Forbes. Sahm. Weissfeld. Bayled Scout . Diagnóstico microbiológico, Editorial Panamericana,
   2004.
• Brooks. Geo F. Microbiología médica. Editorial moderno, 2005.
• Levinson. Microbiología e inmunología médica. Editorial Interamerica, 2006.
• Brooks. Geo F. Microbiología médica. Mc Graw Hill Interamericana, 2004

• Conant E. Micología Médica, Editorial Interamericana, 1999.












CALIFICACIONES SEGUNDO MOMENTO

COLEGIO DE BACHILLERES DEL ESTADO D SINALOA
PLANTEL 25 "LA CAMPIÑA"
CALIFICACIONES DEL GPO 505 2017       TOTAL DE ASISTENCIAS     16
SEGUNDO MOMENTO
505 PROCESAR TÉCNICAS PARA EL  DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO



EVALUACIÓN  COMPETENCIAS
No. NOMBRE DEL ALUMNO Asist. Port. Exam. A. Comp EVALUACIÓN
1 Aispuro Chavez Carmen Rosario 16 10 6 10 A
2 Beltrán Fraide Vanessa Monserrat 16 10 4 10 C
3 Beltrán Medina Silvia thalia 16 10 6 10 B
4 Cansdales Sevilla Kevin Alfredo 16 10 6 10 B
5 Chavez Nuñez Yizelt Angelica 16 10 9 10 A
6 Espinoza Bustamante Brandon 16 10 8 10 A
7 Felix Ornelas Edna Cecilia 16 10 6 10 B
8 García Meraz Briceida Sarahi 16 8 3 10 C
9 Gastelum Camacho Victor Alexis 14 6 5 10 B
10 Gónzalez Felix Pamela Guadalupe 16 10 6 10 B
11 Laureano Ruperto Esthepania 16 10 9 10 A
12 Meza Madueño Brenda Yesenia 16 10 4 10 C
13 Morgan Cruz Julisa Karina 16 5 6 10 B
14 Recio Cabanillas Lizeth Esmeralda 16 10 6 10 B
15 Rodríguez Núñez Gabriela Jazmín 16 10 6 10 B
16 Sainz Zamudio Jesús Ramón 16 10 8 10 A
17 Sánchez  Gastélum Lourdes Ariadna 16 10 9 10 A
18 Soto Alcalá Axel Heriberto 16 10 9 10 A
19 Soto Garay Linda Yamilee 14 6 4 10 A
20 Vega Aguirre Ernesto Alonso 16 8 7 10 A
21 Vazquez Marquez Karely Vianey 16 10 6 10 A

lunes, 16 de octubre de 2017

ESTAFILOCOCOS

ESTAFILOCOCOS

Los estreptococos son microorganismos aerobios grampositivos que causan muchas enfermedades, entre ellas faringitis, neumonía, infecciones de la piel y de las heridas, septicemias y endocarditis.
 Los síntomas varían según el órgano infectado. Las secuelas incluyen la fiebre reumática y la glomerulonefritis. La mayoría de las cepas son sensibles a penicilina, aunque recientemente han aparecido cepas resistentes a macrólidos.
Clasificación
Pueden diferenciarse 3 tipos diferentes de estreptococos a partir de su apariencia cuando se cultivan en agar con sangre de carnero. Los estreptococos β-hemolíticos producen zonas de hemólisis clara alrededor de cada colonia, los estreptococos α-hemolíticos (comúnmente llamados estreptococos del grupo viridans) quedan rodeados por una zona con cambio de coloración verdosa debida a la hemólisis incompleta, y los estreptococos γ-hemolíticos no producen hemólisis.
La clasificación posterior, basada en los hidratos de carbono de la pared celular, divide a los estreptococos en los grupos A a H y K a T de Lancefield ( Clasificación de los estreptococos). Los estreptococos del grupo viridans forman un grupo separado que es difícil de clasificar. En la clasificación de Lancefield, los enterococos inicialmente se incluyeron en el grupo de los estreptococos D. Recientemente, los enterococos se clasificaron como un género separado (ver infecciones por enterococos).
Enfermedades causadas por estreptococos
El patógeno estreptocócico más importante es el S. pyogenes, que es β-hemolítico y pertenece al grupo A de Lancefield, y por ello se lo describe como estreptococo β-hemolítico del grupo A (GABHS, Group A Beta-Hemolytic Streptococci).
 Las 2 enfermedades agudas más comunes causadas por este patógeno son la faringitis y las infecciones de la piel; además, unas 2 semanas después de la infección se producen en algunos pacientes complicaciones tardías no supurativas (fiebre reumática, glomerulonefritis aguda).
Las enfermedades causadas por otras especies de estreptococos son menos prevalentes, y por lo general involucran la infección de los tejidos blandos o endocarditis ( Clasificación de los estreptococos). Algunas infecciones no causadas por GABHS se presentan con preferencia en determinadas poblaciones (p. ej., los estreptococos de grupo B en neonatos y mujeres puérperas).
Las infecciones pueden diseminarse a través de los tejidos afectados y a lo largo de las vías linfáticas hasta llegar a los ganglios linfáticos regionales. Pueden causar también complicaciones supurativas locales, como abscesos periamigdalinos, otitis media, sinusitis y bacteriemia. La supuración depende de la gravedad de la infección y de la susceptibilidad del tejido.




Imagen cortesía de la Public Health Image Library de los Centers for Disease Control and Prevention.
La faringitis por estreptococos en general está causada por GABHS. Aproximadamente el 20% de los pacientes presenta dolor de garganta, fiebre, enrojecimiento de la faringe y exudado purulento en las amígdalas. El resto de los casos muestra signos menos prominentes, y se presenta al examen como una faringitis viral. Los ganglios cervicales y submaxilares pueden estar hipertróficos y sensibles al tacto. La faringitis estreptocócica puede producir abscesos periamigdalinos (ver Absceso y celulitis periamigdalinos). La tos, la laringitis y las secreciones nasales no son características de la infección faríngea por estreptococos; su presencia indica otra causa (generalmente viral o alérgica).


Imagen cortesía de la Public Health Image Library de los Centers for Disease Control and Prevention.
La escarlatina es rara en la actualidad, pero aún se producen brotes. La transmisión aumenta en ambientes que favorecen el contacto cercano entre las personas (p. ej., en las escuelas o guarderías). La escarlatina, una enfermedad predominante de la infancia, generalmente sigue a una infección estreptocócica faríngea; con menor frecuencia, sigue a infecciones estreptocócicas en otros sitios (p. ej., la piel). Está causada por cepas de estreptococos del grupo A que producen una toxina eritrogénica, la cual causa una rubefacción cutánea difusa rosada-rojiza que se blanquea al presionarla. El exantema se observa más en el abdomen o a los costados del tórax y en forma de líneas rojas oscuras en los pliegues cutáneos (líneas de Pastia) o como palidez peribucal. La erupción consiste en elevaciones papulosas características, pequeñas (de 1 a 2 mm) y numerosas, que dan a la piel un aspecto de papel de lija. A menudo, la capa superior de la piel enrojecida se descama después del período febril. También se observa la lengua en fresa (papilas inflamadas que protruyen a través de una cubierta de color rojo intenso), que debe diferenciarse de la que se observa en el síndrome de shock tóxico (ver Síndrome de shock tóxico (TSS)) y en la enfermedad de Kawasaki (ver Enfermedad de Kawasaki (EK)). Otros síntomas son similares a los de la faringitis estreptocócica, y la evolución y el tratamiento de la escarlatina son similares a los de otras infecciones por patógenos del grupo A.


miércoles, 13 de septiembre de 2017

TIPO Y FUNCIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO

TIPOS Y FUNCIONES DE LOS MEDIOS DE CULTIVO.
Según su estado físico (consistencia).

1) Medios líquidos: Son los que se presentan en este estado, denominándose por esta razón caldos. El medio líquido más utilizado es el llamado caldo nutritivo, compuesto principalmente de extracto de carne, peptona y agua. Se utiliza fundamentalmente cuando se pretende la obtención de una suspensión bacteriana de una determinada concentración.
2) Medios sólidos: Se preparan a partir de los medios líquidos, agregándoles un agente gelificante. Los más utilizados son la gelatina y el agar. Pueden utilizarse para diferentes fines, los más importantes son: agar comercial para la industria alimenticia, agar bacteriológico, agares purificados y agarosa, utilizada para electroforesis en gel.

3) Medios semisólidos: Se preparan a partir de los medios líquidos, agregando a éstos un agente solidificante en una proporción menor que para preparar medios sólidos. Uno de sus usos es la investigación de la movilidad de las bacterias
Según su utilización.
1)      Medios comunes: Son aquellos que poseen los componentes mínimos para que pueda producirse el crecimiento de bacterias que no necesiten requerimientos especiales. El medio más conocido de este grupo es el agar nutritivo o agar común, que resulta de la adición de agar al caldo nutritivo.
       2) Medios de enriquecimiento: incorporan una serie de factores indispensables para el crecimiento de microorganismos exigentes. Este enriquecimiento se hace por adición de sangre u otros productos biológicos (sangre, suero, leche, huevo, b ilis, etc.) que aportan dichos factores.
3) Medios selectivos: Son medios utilizados para favorecer el crecimiento de ciertas bacterias contenidas en una población poli microbiana. El fundamento de estos medios consiste en facilitar nutricionalmente el crecimiento de una población microbiana específica.
4) Medios inhibidores: Cuando las sustancias añadidas a un medio selectivo impiden totalmente el crecimiento de una población microbiana, se denomina inhibidor. Los medios inhibidores podrían considerarse como una variante más restrictiva de los medios selectivos.
5) Medios diferenciales: Se utilizan para poner en evidencia características bioquímicas que ayuden a diferenciar géneros o especies.

6) Medios de identificación: Son los destinados a comprobar alguna cualidad específica que puede servirnos para reconocer la identidad de un microorganismo. Estos medios han de poseer los elementos necesarios para asegurar el crecimiento de los microorganismos, el sustrato específico que vaya a ser metabolizado y el indicador que nos muestre el resultado.
7) Medios de multiplicación: Sirven para obtener una gran cantidad de células a partir de un microorganismo ya aislado. Se emplean en la obtención de vacunas, en la investigación y en la industria.
8) Medios de conservación: Se utilizan para conservar una cepa que, por diversas razones nos interese mantener. Fundamentalmente se utilizan como controles de calidad de las pruebas y reactivos utilizados en el Laboratorio de Microbiología.
9) Medios de transporte: Se usan para el transporte de muestras clínicas que no pueden sembrarse inmediatamente.

Agar Chocolate (CHOC) es un medio de cultivo enriquecido y no selectivo. Es una variante del agar sangre. Contiene glóbulos rojos, que han sido lisados por el suave calentamiento a 56 °C. Este agar se usa para el delicado y exigente crecimiento de bacterias respiratorias, como por ejemplo Haemophilus influenzae.
Estas bacterias necesitan factores de crecimiento, como el NAD y hematina, componentes que podemos encontrar dentro de los glóbulos rojos; por lo tanto, un prerrequisito lógico para el crecimiento es la lisis de los glóbulos rojos. El agar se llama así debido a su parecido con el chocolate, pero no contiene nada de este.
Debido a que este medio soporta muchos tipos de bacterias, no es muy útil para coprocultivos.
El agar MacConkey es un medio de cultivo selectivo y diferencial para bacterias diseñado para aislar selectivamente bacilosGram negativos y entéricos (encontrados normalmente en el tracto intestinal) y diferenciarlos sobre la base de la fermentación de la lactosa.1​ El cristal violeta y las sales biliares inhiben el crecimiento de organismos grampositivos, lo que permite la selección y el aislamiento de bacterias gramnegativas. Las bacterias entéricas que tienen la habilidad de fermentar lactosa pueden ser detectadas utilizando el carbohidrato lactosa y el indicador de pH rojo neutro.
 Uso.-.
 Los ingredientes necesarios para este medio son los siguientes: sales biliares (medio inhóspito para el crecimiento de bacterias Gram positivas, excepto Enterococcus y algunas especies de Staphylococcus), colorante cristal violeta (inhóspito para cierto tipo de bacterias Gram-positivo), indicador rojo neutro (el cual marca microorganismos que fermenten la lactosa), lactosa, peptona y cloruro sódico.3

El agar Sabouraud es un medio de cultivo que por sus características funciona como medio de enriquecimiento para hongos y que en caso de contener cloranfenicol u otro antibiótico, se convierte en un medio selectivo para los mismos. El medio contiene peptonas1​ y una elevada concentración de glucosa que favorece el crecimiento de los hongos sobre las bacterias. Es utilizado para el cultivo de hongos, especialmente dermatofitos, aunque también pueden desarrollarse en él cierto tipo de bacterias filamentosas tales como Nocardia.234
Fue utilizado por primera vez por Raymond Sabouraud en 1892. Más tarde Chester W. Emmons mejoró el medio acercando el pH al neutro (pH entre 5,5 y 6,0) y disminuyendo el nivel de glucosa para permitir el crecimiento de otros subcultivos de hongos.
El agar nutritivo es un medio de cultivo usado normalmente como rutina para todo tipo de bacteria. Es muy útil porque permanece sólido incluso a relativamente altas temperaturas. Además, el crecimiento bacteriano en este agar lo hace en la superficie, por lo que se distinguen mejor las colonias pequeñas.
En un caldo de nutrientes, la bacteria crece en el líquido, y aparece como una sustancia espesa, con colonias difícilmente observables.
El agar nutritivo contiene normalmente (p/v)



Agar CLED (Agar cistina-lactosa deficiente en electrolitos)
es un medio de cultivo diferencial para aislar y contar las bacterias presentes en la orina. Favorece el crecimiento de los patógenos y contaminantes urinarios aunque, debido a la ausencia de electrolitos, impide la indebida proliferación de especies de Proteus.

Agar R2A
Un agar inespecífico que imita el agua. Usado para análisis del agua.
Agar cetrimida
Medio utilizado para el aislamiento selectivo de Pseudomonas aeruginosa y de otras especies del género Pseudomonas.

 

Medios para hongos

Agar glucosado de Sabouraud
el Agar glucosado de Sabouraud es usado para cultivar hongos y tiene un pH bajo que inhibe el crecimiento de la mayoría de bacterias, además tiene un antibiótico (gentamicina) que inhibe específicamente el crecimiento de bacterias gramnegativas.
Agar Infusión Cerebro Corazón
Es un medio muy rico en nutrientes, que proporciona un adecuado desarrollo microbiano. La infusión de cerebro de ternera, la infusión de corazón vacuno y la peptona, son la fuente de carbono, nitrógeno, y vitaminas. La glucosa es el hidrato de carbono fermentable, el cloruro de sodio mantiene el balance osmótico y el fosfato disódico otorga capacidad buffer.


es un medio utilizado para el cultivo de hongos y levaduras a partir de muestras de alimentos, derivados de leche y productos cosméticos.